WYKONANIE PREPARATU MIKROSKOPOWEGO SKÓRKI LIŚCIA SPICHRZOWEGO CEBULI
Potrzebne materiały: cebula, szkiełko podstawowe i szkiełko nakrywkowe, igła preparacyjna, pęseta, zakraplacz, zlewka z wodą.
Wykonanie preparatu:
1. Zakraplaczem nanieść kroplę wody na środek szkiełka podstawowego.
2. Igłą preparacyjną i pęsetą ściągnąć cienką skórkę z wewnętrznej strony liścia cebuli.
3. Umieścić skórkę na kropli wody na szkiełku podstawowym.
4. Delikatnie położyć szkiełko nakrywkowe ukośnie do szkiełka podstawowego i nakryć nim przygotowany materiał tak, aby na preparacie nie pozostały pęcherzyki powietrza.
Kilka przykładów rzeczonej skórki |
Przeprowadzanie obserwacji mikroskopowej:
1. Za pomocą wbudowanego w mikroskop źródła światła lub lusterka uzyskać równomierne oświetlenie pola widzenia.
2. Umieścić preparat na stoliku w polu widzenia. Zaczynając od obiektywu z najmniejszym powiększeniem, wyregulować ostrość obrazu najpierw śrubą makrometryczną, a potem mikrometryczną.
WYKONANIE I OBSERWACJA PREPARATU MIKROSKOPOWEGO LIŚCIA MOCZARKI KANADYJSKIEJ
Potrzebne materiały: liść moczarki kanadyjskiej, szkiełko podstawowe, szkiełko nakrywkowe, pęseta, zakraplacz, zlewka z wodą.
Wykonanie preparatu:
1. Zakraplaczem nanieść kroplę wody na środek szkiełka podstawowego.
2. Za pomocą pęsety umieścić w kropli wody fragment liścia moczarki kanadyjskiej.
3. Delikatnie położyć szkiełko nakrywkowe ukośnie do szkiełka podstawowego i nakryć nim przygotowany materiał tak, aby na preparacie nie pozostały pęcherzyki powietrza.
Moczarka kanadyjska. Na dole po prawej przekrój rośliny |
Preparat mikroskopowy |
Chloroplasty z liścia moczarki kanadyjskiej |
OBSERWACJA PREPARATÓW MIKROSKOPOWYCH TKANEK ROŚLINNYCH
Potrzebne materiały: preparaty trwałe stożka wzrostu korzenia cebuli, skórki liścia kosaćca i zwarcicy w łodydze dyni.
Stożki wzrostu korzenia cebuli |
Włoski wydzielnicze z liścia pelargonii (nic innego nie mogłam znaleźć) |
http://www.neonowka.webege.com/aktywni.htm
WYKONANIE I OBSERWACJA PREPARATU MIKROSKOPOWEGO MIĘKISZU SPICHRZOWEGO BULWY ZIEMNIAKA
Potrzebne materiały: przekrojona bulwa ziemniaka, szkiełko podstawowe, szkiełko nakrywkowe, igła preparacyjna, zakraplacz, zlewka z wodą, płyn Lugola (roztwór jodku w jodku potasu).
Wykonanie: zakraplaczem nanieść kroplę wody na środek szkiełka podstawowego. Następnie za pomocą igły preparacyjnej umieścić nieco miąższu bulwy ziemniaka w kropli wody. Dodać kroplę płynu Lugola, który wybarwi na niebiesko ziarna skrobi obecne w komórkach miękiszu. Tak przygotowany materiał nakryć szkiełkiem nakrywkowym dbając, aby w preparacie nie pojawiły się pęcherzyki powietrza.
"Miękisz spichrzowy - należy kojarzyć ze 'spichlerzem', czyli miejscem przechowywania pożywienia. Taką samą funkcję pełni w roślinach. Nie ma chloroplastów, ale ma zapas pożywienia: ziarna materiału zapasowego. Występuje w organach spichrzowych tj. korzeniu buraka, nasionach grochu, liściach kapusty, bulwach ziemniaka.
Charakterystyczne są ziarna materiału zapasowego."Miękisz spichrzowy |
http://matura-biol.blogspot.com/2010/10/tkanka-miekiszowa.html
OBSERWACJA PREPARATÓW MIKROSKOPOWYCH ORGANÓW ROŚLINNYCH
Potrzebne materiały: preparaty trwałe korzenia bobu, łodygi powojnika, liścia sosny.
Na każdym z preparatów rozpoznaj odpowiednie części roślin i ich tkanki:
Przekrój poprzeczny przez łodygę paproci, powiększenie 100x |
Przekrój poprzeczny przez łodygę |
Przekroje przez korzeń |
Przekrój poprzeczny przez igłę sosny |
WPŁYW DWUTLENKU WĘGLA NA INTENSYWNOŚĆ FOTOSYNTEZY
PRZEPROWADZANIE DOŚWIADCZENIA + METODA NAUKOWAProblem badawczy: Czy stężenie dwutlenku węgla wpływa na intensywność fotosyntezy?
Hipoteza: Wzrost stężenia dwutlenku węgla zwiększa intensywność forosyntezy.
Przewidywanie: Liście moczarki kanadyjskiej zanurzone w wodzie wodociągowej będą wydzielały więcej pęcherzyków tlenu niż te zanurzone w wodzie przegotowanej (zdjęcia urodziwej moczarki kanadyjskiej powyżej).
Materiały: Dwa jednakowe fragmenty pędu moczarki kanadyjskiej, dwie zlewki o pojemności 500 ml, dwie probówki, dwa statywy, termometr do mierzenia temperatury wody, 250 ml wody przegotowanej, 250 ml wody z kranu (obie w temp. ok 25 stopni C), źródło światła w postaci lampy z żarówką o mocy 100 W.
Wykonanie: Przygotuj dwa zestawy w sposób przedstawiony na rysunku, uwzględniając różnice charakterystyczne dla próby badawczej i próby kontrolnej, a następnie ustaw je w jednakowej odległości o źródła światła.
Próba badawcza: Napełnij jedną z probówek wodą przegotowaną i włóż do niej fragment pędu moczarki kanadyjskiej, następnie wstaw probówkę do zlewki z wodą przegotowaną i umocuj na statywie.
Próba kontrolna: Wykonaj takie same czynności jak przy przygotowywaniu próby badawczej, używając wody wodociągowej.
Czas trwania doświadczenia: ok. 45 minut
Metoda zbierania wyników: Policz, ile pęcherzyków tlenu w ciągu 5 minut uwalniają liście moczarki umieszczonej w każdym zestawie. Policz pęcherzyki kilkakrotnie:
- po upływie 10 minut
- po upływie 20 minut
- po upływie 30 minut
Wnioski: .....................................................................................................
WPŁYW WODY NA PRZEBIEG KIEŁKOWANIA
Problem badawczy: Czy do kiełkowania nasion niezbędna jest obecność wody?
Hipoteza: woda jest konieczna do kiełkowania nasion.
Przewidywanie: nasiona rzeżuchy umieszczone na suchej bibule nie będą kiełkowały.
Materiały: dwie szalki Petriego, jedno opakowanie nasion rzeżuchy, lignina, woda.
1. Szalka Petriego 2. Nasiona rzeżuchy i roślina 3. Lignina 4. Zlewki z wodą |
Próba kontrolna: nie dodawał wody, podłoże, na którym znajdują się nasiona, powinno pozostawać suche.
Próba badawcza: dodawaj systematycznie niewielkie ilości wody, dbając, aby lignina, na której znajdują się nasiona, była stale wilgotna.
a) próba kontrolna b) próba badawcza |
Metoda zbierania wyników: codziennie obserwuj zmiany, jakim ulegają nasiona rzeżuchy w każdym z zestawów doświadczalnych, systematycznie sporządzając notatki.
OBSERWACJA PREPARATÓW TKANEK CZŁOWIEKA POD MIKROSKOPEM
Przygotuj potrzebne materiały: preparaty trwałe krwi, tkanki nabłonkowej, tkanki mięśniowej poprzecznie prążkowanej szkieletowej i tkanki kostnej; mikroskop.
Wykonaj obserwację mikroskopową.
Krew |
Tkanka mięśniowa poprzecznie prążkowana szkieletowa |
Jako ciekawostka tkanka mięśniowa gładka serca |
Tkanka kostna zbita: kanały Haversa (a) i osteocyty (b) |
Komórki nabłonka z wybarwioną keratyną (czerwony) i DNA (zielony) |
WYKRYWANIE SKROBI W PRODUKTACH ŻYWNOŚCIOWYCH
Problem badawczy: Które z badanych produktów żywnościowych zawierają skrobię?
Hipoteza: wszystkie produkty roślinne zawierają skrobię.
Przewidywanie: płyn Lugola zabarwi produkty zawierające skrobię na kolor fioletowoniebieski.
Materiały: kawałki chleba, ziemniaka, selera, jabłka, białego sera, mięsa, łyżeczka mąki ziemniaczanej, woda, zlewka, zakraplacz, płyn Lugola, 6 małych spodków.
Wykonanie:
próba kontrolna: wsyp do zlewki łyżeczkę mąki ziemniaczanej i zalej ja niewielką ilością wody (ok. 50 ml). Dodaj 3 krople płynu Lugola.
próba badawcza: na spodkach połóż osobno kawałki przygotowanych produktów. Na każdy z nich nanieś po 3 krople płynu Lugola.
Czas trwania doświadczenia: 20 s
Metoda zbierania wyników: zaobserwuj zmianę koloru produktów pod wpływem płynu Lugola.
Doświadczenie jest opisane tutaj, na samym dole: http://niesamowitenotatki.blogspot.com/2012/01/co-ma-chemia-do-biologii-ano-duzo.html
WPŁYW WYSIŁKU FIZYCZNEGO NA WARTOŚĆ TĘTNA I CIŚNIENIA KRWI
Problem badawczy: Czy podczas wysiłku fizycznego zmienia się rytm pracy serca i ciśnienie krwi?
Hipoteza: wysiłek fizyczny wpływa na zmianę rytmu pracy serca i ciśnienia krwi.
Przewidywanie: wysiłek fizyczny powoduje przyspieszenie pracy serca i wzrost ciśnienia krwi.
Materiały: stoper, ciśnieniomierz.
Wykonanie: doświadczenie muszą przeprowadzać dwie osoby. Pierwsza z nich musi przebiec dowolny dystans w czasie 1 minuty. Druga osoba musi zmierzyć za pomocą stopera czas biegu oraz wykonać pomiar tętna i ciśnienia krwi.
Próba kontrolna: zmierz tętno i ciśnienie krwi osoby pozostającej w spoczynku. Otrzymane wyniki zapisz w tabeli.
Próba badawcza: zmierz tętno i ciśnienie krwi natychmiast po zakończeniu biegu.
Uwaga: badając tętno po biegu, zastosuj krótki czas pomiary (15 s), a następnie określ jego wartość w przeliczeniu na jedną minutę (mnożąc wynik przez 4).
Brak komentarzy:
Prześlij komentarz